大豆粉:將生大豆粉碎,過60目標(biāo)準(zhǔn)篩。在85 ℃和140 ℃下分別處理0、45、90、135和180min冷卻后裝入封口袋保存?zhèn)溆谩?/font>
1.2化學(xué)試劑
本實驗所用試劑均為分析純(AR),實驗用水為蒸餾水。
1.3測定方法
1.3.1pH增值法
實驗原理:將研細(xì)的試樣與尿素緩沖液混合,尿素在尿素酶作用下水解產(chǎn)生氨,使溶液pH 值改變,改變的程度與脲酶活性大小相關(guān),因此可以用其與空白溶液的差值表示脲酶活性高低, 單位為△pH 值。
1.3.1.1主要溶液配制(1)磷酸緩沖液:將3.403 g磷酸氫二鉀加入100 ml水中溶解;將4.335 g磷酸氫二鉀溶于100 ml水中;將兩種溶液混合,稀釋至1000 ml。用弱酸或弱堿調(diào)至pH =7.0。
(2)尿素緩沖液:將15 g尿素加入500 ml上述磷酸緩沖液中。用弱酸或弱堿調(diào)至pH =7.0。
1.3.1.2操作方法取0.200 g試樣,裝入比色管中。加入10 ml尿素緩沖液,迅速蓋上蓋子,劇烈搖動。將比色管置于30±0.5 ℃的恒溫水浴鍋中,準(zhǔn)確保持30 min。
另稱取等量試樣放入另一支比色管中,加入10 ml磷酸緩沖液,蓋上蓋子,將試樣與緩沖液混合均勻,置于水浴鍋中保持30 min,作為空白試驗。
每隔5 min將水浴鍋中比色管中的試樣搖勻一次。
每個比色管保持30 min后,從水浴鍋中取出,倒出上清液于小燒杯中。并在從水浴鍋中取出恰好5 min時,用酸度計測出pH值。
1.3.1.3
計算公式UA= pH 1-pH 0
式中:UA——脲酶活性,△pH;
pH 1——樣品使尿素分解后的樣液pH值;
pH 0——空白樣液的pH值.
1.3.2滴定法 原理:樣品與中性尿素緩沖液混合,在( 30±0.5) ℃下保持30 min, 樣品中脲酶催化尿素水解產(chǎn)生氨,用過量的鹽酸中和氨,再用氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液回滴到溶液pH 值為4.70。脲酶活性用每克樣品在30±0.5 ℃下每分鐘產(chǎn)生氨態(tài)氮的毫克數(shù)表示,單位為NH3 mg/ g·min。
1.3.2.1
溶液配制(1)尿素緩沖液:將8.95 g磷酸氫二鈉和3.40 g磷酸二氫鈉溶于水中,并稀釋至1000 ml,再將30 g尿素溶于此磷酸緩沖液中。
(2)0.1 mol/L鹽酸溶液:8.3 ml鹽酸注入1000 ml水中。
(3)0.1 mol/L氫氧化鈉溶液:稱取4 g氫氧化鈉溶于水中,并稀釋至1000 ml。
1.3.2.2
操作方法(1)氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液的標(biāo)定
稱取0.6 g于105~110 ℃烘至恒重的基準(zhǔn)鄰苯二甲酸氫鉀,準(zhǔn)確至0.0001 g,溶于50 ml水中,加2滴酚酞指示劑,用配制好的氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液滴定至溶液呈粉紅色。
同時做空白試驗。
(2)UA的測定
稱取0.2000 g試樣,轉(zhuǎn)入比色管中,加入10 ml尿素緩沖液,立即蓋好蓋子并劇烈搖動。置于30±0.5℃恒溫水浴上準(zhǔn)確保持30 min后立即加入10 ml 0.1 mol/L鹽酸,迅速冷卻到20℃,將比色管內(nèi)容物全部轉(zhuǎn)入燒杯,用水沖洗比色管2~3次,立即用標(biāo)準(zhǔn)氫氧化鈉溶液滴定至pH=4.7。
另取比色管做空白試驗,加入10 ml尿素緩沖液,10 ml 0.1 mol/L鹽酸。稱取與上述試樣量相當(dāng)?shù)脑嚇樱杆偌尤氡壬苤校⒓瓷w好比色管并劇烈搖動,在30±0.5℃恒溫水浴上準(zhǔn)確保持30 min,冷卻到20℃,將比色管內(nèi)容物全部轉(zhuǎn)入燒杯,用水沖洗比色管2~3次,用標(biāo)準(zhǔn)氫氧化鈉溶液滴定至pH=4.7。
1.3.2.3
計算公式 U=14×c(V0 - V)/30×m
式中: U—— —每分鐘每克大豆制品釋放氮的毫克量表示的脲酶活性;
c —— —氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液的摩爾濃度(mol/l) ;
V0 —— —空白試驗消耗的標(biāo)準(zhǔn)氫氧化鈉溶液體積(ml);
V—— —測定試樣消耗的標(biāo)準(zhǔn)氫氧化鈉溶液體積(ml) ;
m—— —試樣質(zhì)量( g).
1.3.3蛋白質(zhì)溶解度的測定 原理:氫氧化鉀蛋白質(zhì)溶解度可以反映大豆粕產(chǎn)品加熱過度的情況,不同加熱程度的大豆粕,氫氧化鉀蛋白質(zhì)溶解度不同。先測定大豆粕樣品在規(guī)定的條件下,可溶于氫氧化鉀溶液中的粗蛋白質(zhì)含量,再測定同一大豆粕樣品中總的粗蛋白質(zhì)含量,計算出氫氧化鉀蛋白質(zhì)溶解度[9-11]。
1.3.3.1
操作方法稱取樣品1.5 g,置于250 ml燒杯中,用移液管移取75 ml
氫氧化鉀溶液,用磁力攪拌器攪拌20 min,再將攪拌好的溶液轉(zhuǎn)移至離心管中,以2700 r·pm
離心10 min,用移液管移取濾液15 ml,放入消化管中,用凱氏定氮法測定蛋白含量。
另稱取0.3 g樣品,按照凱氏半微量定氮法測定原料樣品中的粗蛋白含量。
1.3.3.2
計算公式蛋白質(zhì)溶解度=15 ml上清液中粗蛋白質(zhì)的質(zhì)量(g)/ 0.3 g試樣中粗蛋白質(zhì)的質(zhì)量(g)
2結(jié)果與分析
2.1 85℃下不同加工時間段大豆粉脲酶活性及蛋白質(zhì)溶解度85℃下大豆粉脲酶活性及蛋白質(zhì)溶解度結(jié)果見表1。由表可見, 85℃加熱0-180min的條件下,大豆粉脲酶活性及蛋白質(zhì)溶解度變化不明顯。結(jié)果表明85℃下熱處理對大豆蛋白破壞作用不明顯,該溫度大豆粉中的蛋白酶抑制劑的活性不足以破壞。滴定法和增值法測得的脲酶活性大小,在數(shù)值上差異較小。
表1
85℃下大豆粉脈酶活性及蛋白質(zhì)溶解度
Tab.1 The result of urease activit and protein solubility of soybean meal under 85℃
加熱時間
min
| 脲酶活性
| 蛋白質(zhì)溶解度(%)
|
pH增值法UA(△pH)
| 滴定法UA (NH3 mg/g·min)
|
0
| 2.30
| 2.47
| 82.11
|
45
| 2.22
| 2.43
| 81.05
|
90
| 2.16
| 2.40
| 80.07
|
135
| 2.08
| 2.38
| 76.84
|
180
| 2.00
| 2.35
| 75.03
|
2.2 140℃下不同加工時間段大豆粉脲酶活性及蛋白質(zhì)溶解度 由表可見, 140℃加熱條件下,大豆粉脲酶活性及蛋白質(zhì)溶解度隨加熱時間延長降低,135min時,pH增值法測定的脲酶活性為0;蛋白質(zhì)溶解度從82.1%降至22.5%。表明140℃熱處理對大豆蛋白和脲酶活性破壞明顯,說明140℃熱處理可以破壞大豆粉中蛋白酶抑制劑活性,但對蛋白質(zhì)品質(zhì)也有不良影響。兩種方法測得的脈酶活性大小,與85℃熱處理一樣,在數(shù)值上滴定法稍大, 但與增值法無明顯區(qū)別。
表2. 140℃下大豆粉脈酶活性及蛋白質(zhì)溶解度
Tab.2 The result of urease activit and protein solubility of soybean meal under 140℃
加熱時間
min
| 脲酶活性
| 蛋白質(zhì)溶解度(%)
|
pH增值法UA(△pH)
| 滴定法UA (NH3 mg/g·min)
|
0
| 2.30
| 2.47
| 82.1
|
45
| 0.15
| 0.20
| 72.5
|
90
| 0.04
| 0.05
| 53.8
|
135
| 0.00
| 0.02
| 33.7
|
180
| 0.00
| 0.00
| 24.3
|
3討論
3.1兩種方法對脲酶活性測定結(jié)果的比較從本實驗結(jié)果表明,雖然不同方法測定同一樣品的結(jié)果在數(shù)值上不完全等,但兩種方法所測得脲酶活性的強(qiáng)弱趨勢相一致。根據(jù)國家在制定大豆餅粕脲酶活性的測定方法(滴定法)時,并規(guī)定了大豆餅粕脲酶活性用此方法測得的數(shù)值不應(yīng)大于0.4 NH3mg/g·min[7,12]。從表1和表2結(jié)果可見,在85℃條件下,作用0~180 min內(nèi),大豆粉的脲酶活性均未能達(dá)到國家標(biāo)準(zhǔn)。結(jié)果表明,在該條件下產(chǎn)品所含胰蛋白酶抑制因子的被破壞程度較低,并對大豆粉蛋白的質(zhì)量影響不大。相對而言,在140℃下,作用0~180min內(nèi),大豆粉的脲酶活性已大大降低,均達(dá)到國家標(biāo)準(zhǔn),尤其是當(dāng)作用時間超過135 min后,兩種方法測定的結(jié)果顯示被測樣品中脲酶活性為0。
3.2脲酶活性與蛋白質(zhì)溶解度的關(guān)系除了脲酶活性外,蛋白質(zhì)溶解度是近年來判定大豆制品質(zhì)量的常用指標(biāo)。由于脲酶活性高低反映大豆餅粕受熱程度,可間接反映蛋白酶抑制因子活性高低,但當(dāng)脲酶活性為0后,進(jìn)一步加熱,脲酶活性仍為0,即此時脲酶活性不再能反映大豆餅粕的受熱程度,而蛋白質(zhì)溶解度仍可隨受熱程度的增加進(jìn)一步降低[13],因此,脲酶活性主要用于評價大豆制品是否過生,在反映大豆及其制品的加工是否受熱過度方面,用蛋白質(zhì)溶解度來評判更為適宜[7]。
20世紀(jì)60年代末,Rinehart首先采用0.2%氫氧化鉀測蛋白質(zhì)溶解度的方法來評定大豆粕加工的適宜程度,由于該方法簡單、易學(xué),重復(fù)性和再現(xiàn)性好,被世界各國廣泛采用[14]。Araba和Dale研究結(jié)果表明,當(dāng)大豆粕的蛋白質(zhì)溶解度低于70%時,很可能影響其營養(yǎng)價值,而當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)溶解度低于65%時,則肯定大豆粕已加熱過度[15-16]。近年來,隨著加工技術(shù)的不斷改進(jìn)和完善,完全可以生產(chǎn)出蛋白質(zhì)溶解度超過85%甚至達(dá)到90%,而脲酶活性接近于零的優(yōu)質(zhì)大豆產(chǎn)品[11]。
從表1和2結(jié)果顯示,大豆粉的蛋白質(zhì)溶解度隨著加工溫度的提高和作用時間的延長而下降。在140℃下,隨著作用時間的延長,大豆粉蛋白質(zhì)溶解度降低更加顯著。同時,兩種方法的測定結(jié)果在數(shù)值上不能相互替代,由此可見,在對大豆餅粕脲酶活性進(jìn)行表述或提出具體限量要求時,應(yīng)明確測定方法,避免引起不必要的糾紛。對于鑒定豆粕質(zhì)量時,脲酶活性只能判定其內(nèi)非營養(yǎng)成分的鈍化程度,而對過度加熱的豆粕蛋白變性程度卻無法測定,故建議用脲酶活性與蛋白質(zhì)溶解度相結(jié)合的檢測手段進(jìn)行評價。
作者: xishanzhongke 時間: 2009-7-27 10:54
詳細(xì)樓主的資料,收藏了!
作者: weihua0608 時間: 2009-8-2 17:09
怎么沒看到苯酚紅這三個字呢?
作者: LXSLDXH0521 時間: 2009-8-2 22:40
我們沒有離心機(jī), 測不了氫氧化鉀溶解度
作者: zhenjieli 時間: 2012-6-1 12:01
看后不能光說感謝就行了,分享我的的體會:
1、該方法測脲酶活性比較簡單,大部分企業(yè)都能做的,而且相對較準(zhǔn);
2、脲酶活性反映胰蛋白酶抗?fàn)I養(yǎng)因子的多少和大豆加工的生熟程度以及蛋白溶解度——主要是這三點。
3、一般加熱過度的豆粕脲酶活性會高,蛋白溶解度會低于65%。較好的豆粕、大豆溶解度胃80左右。
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